做蛋白互作验证，Pull-down 是非常经典的体外实验，常用来验证酵母双杂交初筛结果、确认两个蛋白的直接物理结合。很多小伙伴实验做完，WB 条带杂、背景高、结果说不清，审稿人第一句话就是：对照设置不全，无法区分特异性互作和非特异性吸附。

上一篇我们梳理了转录因子与启动子互作研究的完整证据链：从候选 TF 筛选、体外 EMSA 直接结合验证，到双荧光素酶元件定位、CUT&Tag/ChIP 体内验证，最后搭配遗传材料完成功能验证。 整套研究涉及 EMSA、酵母单杂交、DAP-seq、ChIP、CUT&Tag、双荧光素酶，

很多做植物分子的小伙伴都做过启动子顺式元件预测、GUS 染色、双荧光素酶启动子活性检测。通过 PlantCARE 预测启动子顺式作用元件，再借助 GUS 染色、双荧光素酶实验，我们可以确认：这段启动子具备转录活性，能够驱动下游基因表达。

慢病毒感染说难也不难，关键就在于细胞状态、病毒用量、助转剂和感染方式这几个点。下面这套流程，新手可以直接照抄。

泛素 - 蛋白酶体途径是真核细胞内调控蛋白稳定性、参与炎症、代谢、肿瘤、骨关节疾病等众多病理进程的核心翻译后修饰通路。

在生命科学、药学与基础医学研究中，我们常常需要精准识别样品里藏着哪些分子、测定它们的含量，挖掘疾病标志物、解析蛋白功能、追踪代谢通路。质谱（质谱法），正是一把打开微观分子世界大门的 “金钥匙”。

详解各类蛋白质翻译后修饰 PTM：磷酸化、泛素化、乙酰化、甲基化、糖基化、脂修饰等的原理与生物学功能，蛋白修饰课题实验参考。普拉特泽生物提供载体构建、慢病毒包装、Co-IP 等蛋白互作与修饰相关实验服务。

0.22μm 滤膜可以除菌，但无法去除支原体、病毒、蛋白大分子。本文整理 0.1/0.22/0.45/0.8μm 滤膜适用场景，细胞实验配液过滤参考，普拉特泽生物提供细胞实验、慢病毒包装服务。

质粒转化为什么选择 42℃热激？本文讲解氯化钙感受态制备与热激原理，对比 37℃、45℃的弊端，理解转化关键控制点。普拉特泽生物提供载体构建、分子克隆、质粒构建服务。

做分子生物学实验，质粒是大家每天都要打交道的基础工具。载体克隆、蛋白表达、细胞转染、慢病毒 / AAV 包装、CRISPR 基因编辑…… 不